| Этап обработки | Листовые овощи (pH5,5) | Ягоды (pH3,5) | Основные технические параметры |
|---|---|---|---|
| Предварительная обработка образца | 200 мл глицинового буфера, гомогенизация ткани в течение 30 секунд | 200 мл глицинового буфера, осторожное перемешивание в течение 1 минуты | Избегайте механических повреждений образца и сохраняйте целостность ооцист |
| Центрифугирование при ≤2500g в течение 10 минут (без тормоз) | Центрифугирование при ≤2500g в течение 10 минут (без тормоза) | Для достижения эквивалентных показателей восстановления можно использовать центрифугирование при 1100g. | |
| Иммуномагнитное разделение | Специфическое связывание магнитных частиц, покрытых антителами | Специфическое связывание магнитных частиц, покрытых антителами | Условия кислотной диссоциации: pH ≤ 3,0 |
| Флуоресцентное окрашивание | ФИТЦ-конъюгированное моноклональное антитело + DAPI контрастное окрашивание | ФИТЦ-конъюгированное моноклональное антитело + DAPI Контрастное окрашивание | Высушите при 37-42 °C, инкубируйте в темноте. |
Стандарт требует от лабораторий создания комплексной системы контроля качества, включая внутренний контроль экстракции (IEC) и положительный контроль процесса (PPC). Внутренний контроль экстракции с использованием предварительно меченых флуоресцентных ооцист/цист, вносимых со скоростью 80-120 на образец, отслеживает валидность метода, начиная с этапа элюирования. Положительные контроли процесса рекомендуется проводить не реже одного раза на каждые 20 образцов, с минимальной частотой четыре раза в год. Типичные данные по извлечению показывают, что выделение Cryptosporidium составляет 10-62% для листовых овощей и 16,7-65% для Giardia. Коэффициенты выделения Cryptosporidium в ягодах могут достигать 64,7%. Это изменение в первую очередь обусловлено различиями в свойствах матрицы образца и методах работы.
| Идентификационные признаки | Ооцисты криптоспоридий | Цисты лямблий | Метод подтверждения |
|---|---|---|---|
| Морфологические характеристики | Сферические/овальные, 4-6 мкм | Овальные, 8-12×7-10 мкм | ДИК-дифференциально-интерференционный контраст |
| Характеристики флуоресценции | Яблочно-зеленая кольцевая флуоресценция | Яблочно-зеленая кольцевая флуоресценция | Фильтр ФИТЦ (480/520 нм) |
| Окрашивание ядер | 4 ядра спор отображаются как небесно-голубые точки | 2-4 ядра сосредоточены в полярных областях | Фильтр DAPI (375/420 нм) |
| Специфические маркеры | Моноклональные антитела против Cryptosporidium | Моноклональные антитела против Giardia | Специфичность иммунофлуоресценции |
Этот стандартный метод имеет следующие технические ограничения: во-первых, он не может различать патогенные и непатогенные виды; Все обнаруженные ооцисты/цисты требуют дальнейшей идентификации методом молекулярного типирования. Во-вторых, этот метод не позволяет определить жизнеспособность или инфекционность паразита. В-третьих, результаты молекулярного обнаружения могут быть искажены при использовании положительных контролей процесса. Наконец, этот метод требует высокого технического опыта оператора и навыков интерпретации микроскопических данных.
Обработка образцов: Для листовых овощей рекомендуется использовать целые листья (без стеблей); для ягод – оставлять плоды целыми. Вес образца должен составлять не менее 25 г, и за один раз можно обрабатывать не более 100 г. Образцы должны храниться в холодильнике при температуре 4-8 °C во время транспортировки, чтобы предотвратить порчу.
Предотвращение перекрестного загрязнения: Оборудование для обработки положительного контроля должно быть отделено от оборудования для обработки образцов, или должны использоваться эффективные меры дезактивации (обработка гипохлоритом натрия ≥1000 мг/л). Рекомендуется использовать одноразовые расходные материалы, чтобы избежать перекрестного загрязнения.
Требования к обучению: Тестировщики должны пройти специализированное обучение по микроскопической идентификации, чтобы точно определять атипичные ооцисты/цисты и различать паразитоподобные мешающие вещества, такие как растительные остатки и дрожжи.
Требования к валидации метода: Когда лаборатория впервые внедряет этот метод, необходимо провести валидацию, включая тестирование на восстановление, тестирование специфичности и определение предела обнаружения, чтобы гарантировать пригодность метода в лабораторных условиях.
Стандарт ISO 18744:2016 был разработан на основе результатов оценки воздействия на окружающую среду, полученных в нескольких лабораториях, и объединяет преимущества иммуномагнитной сепарации (ИМС) и иммунофлуоресцентной микроскопии (ИФА). По сравнению с традиционными методами, ключевые инновации этого метода включают: 1) оптимизированный pH элюирующего буфера для различных типов образцов (pH 5,5 для листовых овощей и pH 3,5 для ягод); 2) введение внутреннего контроля экстракции для обеспечения мониторинга процесса; и 3) установление многомерных критериев идентификации (морфология, флуоресценция и ядерное окрашивание).
Настоящий стандарт был разработан Техническим комитетом ISO/TC34/SC9 в сотрудничестве с Комитетом CEN/TC275 и был преобразован в национальные стандарты европейских стран до октября 2016 года. Он отражает растущее внимание к рискам, связанным с паразитами, при испытаниях безопасности пищевых продуктов и предоставляет унифицированные технические спецификации для оценки безопасности свежих сельскохозяйственных продуктов в международной торговле.
С ростом потребления свежих продуктов питания и расширением глобальных цепочек поставок прикладная ценность ISO 18744 становится все более заметной. Будущие технологические разработки могут быть сосредоточены на: 1) интеграции методов молекулярной диагностики для обеспечения возможности идентификации видов насекомых; 2) разработке автоматизированного испытательного оборудования для повышения эффективности испытаний; и 3) интеграции технологий испытаний на жизнеспособность для оценки фактических рисков. Будучи основополагающей технологией испытаний, текущий метод обеспечивает существенную техническую поддержку надзору за безопасностью пищевых продуктов.

© 2026. Все права защищены.