DIN 10161-2 — это стандарт микробиологического исследования мяса и мясных продуктов, разработанный Немецким институтом стандартизации. Он регламентирует метод капельной чашки для подсчета аэробных колоний при температуре 30 °C. Стандарт был первоначально опубликован в феврале 1984 года. В последней версии стандарт был полностью переработан с технической точки зрения и расширено его содержание.
По сравнению с версией 1984 года, в новой версии DIN 10161-2 внесен ряд важных изменений: упрощено название стандарта, добавлены главы с нормативными ссылками, уточнены определения ключевых терминов, добавлены требования к качеству и проверке эксплуатационных характеристик питательных сред, а также внесены всесторонние технические и редакционные изменения.
| Сравнительные параметры | Издание 1984 года | Новая версия стандарта | Техническое значение |
|---|---|---|---|
| Структура стандарта | Базовая структура | Полная система | Улучшение систематичности и работоспособности |
| Определения терминов | Отсутствие четких определений | Стандартизированная интерпретация терминовОбеспечение согласованности результатов испытаний | |
| Проверка качества | Не требуется | Обязательная проверка производительности | Гарантированное испытание точность |
| Технические характеристики | Основные требования | Подробные эксплуатационные характеристики | Снижение операционной изменчивости |
Метод капельной пластины основан на неселективной технике посева на питательный агар. Каждая зона инокулируется 0,05 мл раствора образца или разбавления и инкубируется в аэробных условиях при температуре 30 °C в течение 72 часов. Количество аэробных бактерий в образце рассчитывается путем подсчета колониеобразующих единиц (КОЕ).
Этот метод подходит для мяса, мясных продуктов и продуктов, содержащих мясные ингредиенты. Он прост в эксплуатации, недорог и подходит для крупномасштабного тестирования образцов. Чувствительность обнаружения достигает 1,0×10² КОЕ/г(мл), что эффективно отражает микробный гигиенический статус продукта.
Стандарт требует использования компонентов среды, подходящих для микробиологических целей. Рекомендуются четко заявленные компоненты среды и аналитически чистые химические вещества или высушенные среды. Конкретная формула включает: 5,0 г пептона, 2,5 г дрожжевого экстракта, 1,0 г безводной глюкозы, 9-18 г агара и воду до 1000 мл.
Регулировка pH имеет решающее значение и должна достигать 7,0±0,2 при измерении при 25°C после стерилизации. После аликвотирования среду необходимо стерилизовать при 121°C±1°C в течение 15 минут. Подготовленные чашки Петри можно хранить при температуре 5°C±3°C до 4 недель.
Стандартная формула разбавителя: 1,0 г пептона, 8,5 г хлорида натрия, 0,75 г агара, добавить воды до 1000 мл. Значение pH после стерилизации должно быть 7,0±0,1. Разбавитель следует хранить при температуре 2-8°C в темноте не более 1 месяца, следя за тем, чтобы объем и состав не изменились.
В новой версии стандарта добавлены требования к проверке характеристик питательной среды, которые должны быть проверены с использованием стандартного штамма для количественного коэффициента продуктивности (PR). Конкретные требования указаны в показателях проверки производительности в таблицах 1 и 2.
| Тип среды | Тестовый штамм | Условия культивирования | Критерии приемлемости |
|---|---|---|---|
| Агар для подсчета колоний | Escherichia coli WDCM 00012 | 30±1℃,72±3 ч | Коэффициент продуктивности ≥0,7 |
| Агар для подсчета колоний | Staphylococcus aureus WDCM 00034 | 30±1℃,72±3 ч | Коэффициент продуктивности ≥0,7 |
| Разведение | Escherichia coli WDCM 00012 | 20–25 °C, 45–60 мин | Процент выживаемости ≥ 50% |
Время от приготовления начального разведения до инокуляции питательной среды не должно превышать 30 минут, чтобы гарантировать сохранение микробной активности. Гомогенизация образца должна выполняться в соответствии с DIN EN ISO 6887-1 и DIN EN ISO 6887-2.
С помощью стерильной пипетки нанесите 0,05 мл раствора образца или каждого разведения в двух повторностях (инокуляция разных чашек с одинаковым разбавлением) на отмеченные секции на дне чашки. Используйте максимум шесть капель на чашку, начиная с самого большого разбавления.
Ключевые рабочие моменты: Перед отбором проб пипетку следует промыть и слить три раза, чтобы удалить всю прилипшую бактериальную жидкость. При добавлении капель рекомендуется касаться кончиком пипетки поверхности агара, чтобы убедиться, что вся бактериальная жидкость перенесена в питательную среду. Чтобы лучше использовать поверхность питательной среды, можно использовать кончик пипетки для удлинения капли.
После инокуляции планшет следует оставить горизонтально, пока бактериальная жидкость слегка не высохнет, затем перевернуть и поместить в инкубатор при температуре 30±1°C на 72 часа. Через 24 и 48 часов инкубации планшет следует осмотреть и при необходимости подсчитать колонии. Планшеты следует инкубировать в течение указанного времени.
Выберите для подсчета разделы, содержащие от 1 до 50 четко разделенных колоний, но по крайней мере один раздел для разбавления должен содержать 5-50 колоний. Для небольших, легко подсчитываемых колоний можно подсчитать до 100 колоний.
Используется метод расчета средневзвешенного значения: N = ΣC / (n1 + 0,1n2), где ΣC — сумма количества колоний во всех счетных разделах, n1 — номер раздела для наименьшего подсчитываемого разбавления, а n2 — номер раздела для следующего наибольшего разбавления.
Примечание: объем посевного материала на чашке 0,05 мл эквивалентен разбавлению 1:20 содержимого пробирки или колбы, поэтому его необходимо умножить на 20. Окончательный результат выражается как 1,0-9,9, умноженное на соответствующую степень числа 10, с сохранением одного десятичного знака.
Если два раздела с максимальным объемом посевного материала каждый дают менее 5 колоний, соответствующий результат выдается на основе того, был ли образец разбавлен. Если колонии не растут, предел обнаружения также должен быть указан в определенном формате.
Вся стеклянная посуда должна быть тщательно очищена и стерилизована перед использованием, а пластиковая посуда должна быть стерильной. В дополнение к оборудованию, требуемому стандартом, также требуются водяная баня с регулируемой температурой 50 °C, инкубатор с температурой 30±1 °C, устройство для охлаждения питательной среды и чашки Петри диаметром приблизительно 90 мм.
Лаборатории должны провести валидацию метода перед внедрением данного метода, чтобы гарантировать, что механические пипетки и другое автоматизированное оборудование могут давать сопоставимые результаты. Валидация должна включать такие параметры, как точность, прецизионность, предел обнаружения и предел количественного определения.
Создать всеобъемлющую систему обеспечения качества, включая регулярную проверку производительности питательной среды с использованием стандартных штаммов, участие в мероприятиях по проверке квалификации и внедрение программы внутреннего контроля качества. Все отклонения от стандарта должны быть четко указаны в отчете об испытаниях.
Внедрение DIN 10161-2 имеет большое значение для мониторинга безопасности мясных пищевых продуктов. В связи с постоянным развитием технологии микробиологических испытаний метод капельной чашки, как традиционный количественный метод, по-прежнему играет важную роль во многих лабораториях.
Будущие тенденции развития включают: более широкое применение автоматизированного оборудования, дополнительную валидацию методов молекулярной биологии и скоординированное использование методов быстрого обнаружения. Лаборатории должны выбирать соответствующие методы обнаружения, исходя из собственных условий и потребностей в тестировании, а также обеспечивать соответствие требованиям стандарта.
Этот стандарт применим не только к тестированию мясной продукции в Германии, но и обеспечивает техническую основу для микробиологических испытаний в международной торговле, способствуя международному взаимному признанию и сравнению результатов испытаний.

© 2025. Все права защищены.