DIN EN ISO 6888-1:2019 — ключевой стандарт в области микробиологии пищевых продуктов и кормов, заменивший издание 2003 года. Этот стандарт определяет горизонтальный метод подсчёта коагулазоположительных стафилококков (включая Staphylococcus aureus и другие виды) с использованием агара Бэрда-Паркера. В редакции 2018 года (A2:2018) были представлены ключевые технические новшества, в частности, добавление фибриноген-агара с кроличьей плазмой (RPFA) в качестве альтернативного подтверждающего теста.
По сравнению с изданием 2003 года, издание стандарта 2019 года претерпело пять важных изменений:
| Элементы редакции | Издание 2003 года | Издание 2019 года | Техническое значение |
|---|---|---|---|
| Нормативные ссылки | ISO 11133:2003 | Обновлено до последней версии | Адаптировано к разработке стандартов приготовления питательных сред |
| Питательная среда для подтверждающего теста | Тест на коагулазу в пробирке только | Добавлен метод пластинчатого RPFA | Обеспечивает более быстрый и простой метод подтверждения |
| Характеристики водяной бани | 47°C | Регулируемый 47-50°C | Увеличивает гибкость в контроле температуры |
| Контроль качества питательной среды | Основные требования | Подробные спецификации испытаний производительности | Гарантирует точность результатов испытаний |
| Ссылки | Старые ссылки | Обновлено в соответствии с последними результатами исследований | Отражает технический прогресс |
В стандарте подробно описаны требования к приготовлению агара Бэрда-Паркера:
На 1000 мл среда содержит: 10,0 г панкреатического казеина, 1,0 г дрожжевого экстракта, 5,0 г мясного экстракта, 10,0 г пирувата натрия, 12,0 г L-глицина, 5,0 г хлорида лития и 12–22 г агара (с корректировкой в зависимости от свойств геля). pH после стерилизации должен составлять 7,2 ± 0,2 (измерено при 25 °C).
Раствор теллурита калия: Растворите 1,0 г теллурита калия в 100 мл воды и стерилизуйте фильтрацией через мембрану 0,22 мкм. Удалите любой белый нерастворимый остаток. Раствор следует хранить при температуре 3°C ± 2°C не более одного месяца.
Эмульсия яичного желтка: Стерилизуйте свежие яйца и удалите желток. Смешайте с 4 объемами стерильной воды, нагревайте при температуре 47°C в течение 2 часов, затем дайте отстояться при температуре 3°C ± 2°C в течение 18–24 часов. Надосадочную жидкость следует использовать и хранить не более 72 часов.
Наиболее значительным нововведением в пересмотре 2018 года является введение среды агаризованной с фибриногеном кроличьей плазмы (RPFA) в качестве альтернативного метода подтверждения для теста на коагулазу:
90 мл базальной среды + 0,25 мл раствора теллурита калия + 7,5 мл раствора бычьего фибриногена + 2,5 мл раствора кроличьей плазмы и ингибитора трипсина. Во время приготовления базальную среду необходимо охладить до 47–50 °C. Каждый раствор необходимо предварительно нагреть до 48 °C ± 1 °C и добавлять асептически, чтобы избежать осаждения плазмы.
| Тип теста | Контрольный штамм | Условия культивирования | Ожидаемые результаты |
|---|---|---|---|
| Производительность | Staphylococcus aureus WDCM 00034 | 37°C 24-48 ч | Хороший рост (класс 2) |
| Селективность | Escherichia coli WDCM 00032 | 37°C 48 ч | Полное ингибирование |
| Специфичность | Staphylococcus saprophyticus WDCM 00012 | 37°C в течение 24-48 часов | Черно-серые колонии без ореолов |
Жидкие образцы следует инокулировать непосредственно 0,1 мл раствора для анализа. Нежидкие образцы следует инокулировать разбавлением 10⁻¹. Следует использовать метод поверхностного посева с дубликатами для каждого разбавления. Чашки следует инкубировать аэробно при 35°C или 37°C в течение 24 ± 2 часов и 48 ± 2 часов.
Типичные колонии: Черные или серые, блестящие и приподнятые (1–1,5 мм в диаметре через 24 часа, 1,5–2,5 мм в диаметре через 48 часов), окруженные прозрачной зоной, которая может быть частично мутной. В месте соприкосновения колонии может появиться молочный ореол. Атипичные колонии: Схожие по размеру с типичными колониями, они могут иметь блестящую черную полосу или не иметь узкой белой границы, невидимую или труднонаблюдаемую прозрачную зону, невидимый или труднонаблюдаемый опалесцирующий ореол или серые колонии без прозрачной зоны. Варианты подтверждающих тестов: Стандарт предусматривает два метода подтверждения: традиционный пробирочный коагулазный тест и пластинчатый RPFA-анализ. Анализ в пробирке включает инокуляцию колоний бульоном с сердечно-мозговым экстрактом, культивирование в течение 24 ± 2 часов, затем смешивание 0,1 мл культуры с 0,3 мл плазмы кролика. Анализ инкубируют при температуре 35 °C или 37 °C в течение 4-6 часов и 24 часов, а затем наблюдают за коагуляцией. Анализ на пластине RPFA использует пункционную инокуляцию и наблюдают за образованием ореола через 24-48 часов инкубации.
Формула расчета: a = (b_c × c_c / A_c) + (b_nc × c_nc / A_nc)
Где: a - количество коагулазоположительных стафилококков, подтвержденных на каждой пластине; b_c - количество типичных коагулазоположительных колоний; b_nc — количество атипичных коагулазоположительных колоний; c_c — общее количество типичных колоний на чашке; c_nc — общее количество атипичных колоний на чашке; A_c — количество протестированных типичных колоний; A_nc — количество протестированных атипичных колоний.
Образцы пищевых продуктов: r=0,28 (логарифмическая разница шкалы) или r=1,9 (нормальное отношение шкалы)
Эталонный материал (капсулы приблизительно 5000 КОЕ): r=0,19 или r=1,55
Образцы пищевых продуктов: R=0,43 или R=2,7
Эталонный материал: R=0,39 или R=2,4
Эти данные о точности основаны на международном исследовании оценки воздействия на окружающую среду 1999 года, включавшем различные матрицы, такие как сыр, мясо и яичный порошок, и были рассчитаны с использованием надежных статистических методов, указанных в ISO 16140.
Каждая партия сред должна быть валидирована с использованием стандартных штаммов: Staphylococcus aureus (ATCC 25923) должен хорошо расти и давать типичную реакцию; Escherichia coli (ATCC 25922) должна быть полностью ингибирована; а коагулазоотрицательные стафилококки должны расти, но не давать коагулазо-реакции.
Для образцов, которые могут содержать Proteus, рекомендуется добавлять раствор сульфаметазина (конечная концентрация 0,0005%) в агар Бэрда-Паркера. Для сыра из сырого молока и некоторых сырых мясных продуктов, если ожидается присутствие стафилококков, которые образуют нетипичные колонии на агаре Бэрда-Паркера, или если сопутствующая флора может затмевать целевые колонии, рекомендуется метод агара с кроличьей плазмой/фибриногеном в соответствии с ISO 6888-2.
Планшетный метод RPFA может использоваться в качестве альтернативы пробирочному коагулазному тесту и особенно подходит для испытательных лабораторий с высокой пропускной способностью. Однако следует отметить, что каждая партия коммерческой среды RPFA может иметь различия в производительности, поэтому перед использованием следует использовать положительные и отрицательные контроли для проверки.
В стандарте указано, что некоторые штаммы Staphylococcus aureus могут показывать слабоположительную коагулазную реакцию. Для этих штаммов могут потребоваться дополнительные идентификационные тесты, такие как тесты на чувствительность к лизостафину, продукцию гемолизина, продукцию термонуклеазы и ферментацию маннита.
Настоящий стандарт применим для количественного обнаружения коагулазоположительных стафилококков в пищевых продуктах и кормах. Однако из-за разнообразия пищевых продуктов и кормов для отдельных продуктов могут потребоваться различные специфические методы. В таких случаях следует максимально точно следовать основным принципам данного уровня метода.
В стандарте четко указано, что оба метода (Часть 1 и Часть 2) эквивалентны. Метод Части 2 рекомендуется для пищевых продуктов, которые могут быть загрязнены стафилококками, образующими атипичные колонии на агаре Бэрда-Паркера, или в случаях, когда сопутствующая флора может покрывать целевые колонии.
При принятии настоящего стандарта лаборатории должны разработать соответствующие процедуры контроля качества, включая использование референтных штаммов для проверки эффективности питательной среды, участие в мероприятиях по проверке квалификации и регулярное проведение валидации метода для обеспечения точности и надежности результатов испытаний.

© 2025. Все права защищены.