ASTM D6974-20 определяет стандартизированный метод обнаружения и подсчета гетеротрофных бактерий (ГБК) и грибов в жидких топливах с кинематической вязкостью 24 мм²·с⁻¹ или менее с использованием мембранной фильтрации (МФ). Этот стандарт в первую очередь опирается на метод IP 385 и метод испытаний D5259, обеспечивая важную техническую основу для мониторинга микробного загрязнения топлива.
Этот количественный метод использует технологию мембранной фильтрации для улавливания микроорганизмов из образцов топлива с помощью фильтрующей мембраны из полиэфирсульфона (ПЭС) или ацетата целлюлозы (АЦ) с размером пор 0,45 мкм. После фильтрации фильтр инкубируют на специальной питательной среде и подсчитывают количество колониеобразующих единиц (КОЕ) для количественной оценки степени микробного загрязнения.
Этот метод применим к широкому спектру жидких топлив с кинематической вязкостью 24 мм²·с⁻¹ или менее при температуре окружающей среды, включая дизельное топливо, авиационное топливо и другие среднедистиллятные топлива. Тест можно проводить как на месте, так и в лабораторных условиях, что обеспечивает высокую гибкость и адаптивность.
| Тип оборудования | Требования к спецификации | Примечания |
|---|---|---|
| Фильтрующая мембрана | Размер пор 0,45 мкм, диаметр 47 мм | Предпочтительно использовать предварительно стерилизованную фильтрующую мембрану с сеткой |
| Фильтрующее устройство | Три варианта: тестовое устройство D6426, шприцевая фильтрация, вакуумная фильтрация | Выберите подходящий метод в соответствии с условиями на месте |
| Чашка Петри | Диаметр ≥50 Можно использовать имеющиеся в продаже предварительно инфузионные чашки Петри. Необходимо использовать питательные среды TSA (для бактерий) и MEA (для грибов). Уровень pH должен строго контролироваться в указанном диапазоне. Подробная процедура: Подготовка пробы: Образцы топлива необходимо пропустить через делительную воронку для удаления свободной воды, энергично встряхнуть в течение 30 секунд для равномерного распределения микроорганизмов, а затем дать им отстояться. Объём пробы следует корректировать в зависимости от ожидаемой концентрации микроорганизмов. Для повышения чувствительности определения рекомендуется фильтровать пробы объёмом 200 мл, 20 мл и 2 мл. Варианты фильтрацииСтандарт предусматривает три метода фильтрации: Вариант A: использование испытательного аппарата D6426, подходящего для обработки партий в лабораторных условиях Вариант B: фильтрация с помощью шприца, удобная для работы на месте и быстрого тестирования Вариант C: вакуумная фильтрация, подходящая для рутинного лабораторного анализа Каждый метод включает три основных этапа: фильтрация топлива, промывка моющим средством и промывка раствором Рингера. Подготовка среды и условия культивированияАгар с солодовым экстрактом (MEA)Для культивирования грибков pH обычно доводят до 5,4 ± 0,2, но для подавления роста бактерий его можно довести до pH 3,5. Для дальнейшего подавления бактериального загрязнения в питательную среду можно добавить 0,1% раствор хлортетрациклина (1 мл/100 мл МЭА). Триптический соевый агар (ТСА)Для бактериального культивирования pH необходимо строго контролировать в диапазоне 7,3±0,3. pH необходимо проверить после приготовления; партии, не соответствующие требованиям, следует отбраковать и приготовить среду заново. Условия культивированияСтандартная температура инкубации составляет 25°C±2°C, время инкубации — 3 дня для ТСА и 5 дней для МЭА. Если температура системы отбора проб значительно выше стандартной температуры инкубации, для улучшения восстановления можно использовать условия инкубации, более близкие к температуре системы. Расчет и представление результатовКоличество колоний рассчитывается по следующей формуле: N = CC × 1000 / V Где N - КОЕ·л⁻¹, CC - количество колоний, а V - объем отфильтрованного образца (мл). Если рост колоний не наблюдается, рассчитайте CC как 1 и сообщите Этот метод имеет несколько важных ограничений: микробная агрегация может привести к занижению фактического количества; поврежденные клетки или медленно растущие микроорганизмы могут не образовывать видимые колонии в течение указанного времени; и селективность питательной среды может влиять на эффективность восстановления различных микроорганизмов. Этот метод рекомендуется как часть диагностической или технической программы мониторинга в сочетании с другими параметрами испытаний (такими как биомасса АТФ) для комплексной оценки микробного загрязнения топлива. Перед внедрением программы рутинного мониторинга следует провести валидацию метода, включающую: тестирование эффективности фильтрации, проверку пригодности питательной среды и обучение операторов. Для обеспечения надежности метода рекомендуется использовать образцы с положительным контролем. Каждая партия испытаний должна включать отрицательный контроль (стерильную воду или буфер) для мониторинга загрязнения в процессе эксплуатации. Стандартные штаммы следует регулярно использовать для проверки эффективности питательной среды и пригодности условий культивирования. Результаты микробного подсчета следует интерпретировать с учетом истории эксплуатации топливной системы, других показателей загрязнения и результатов осмотра на месте. Ценность результатов испытаний в одной точке времени ограничена, поэтому рекомендуется создать систему мониторинга тенденций. Стандарт ASTM D6974 был первоначально опубликован в 2003 году. В издании 2020 года в основном пересмотрены спецификации материала мембраны фильтра, а также требования к смешиванию и времени выдержки образцов. По сравнению с предыдущими версиями, в текущей версии больше внимания уделяется гибкости и применимости метода, что позволяет корректировать рабочие параметры в соответствии с конкретными потребностями. С развитием технологий молекулярной биологии в будущем может появиться возможность сочетать методы культивирования с технологиями молекулярной детекции для обеспечения более комплексного решения для оценки микробного загрязнения.
© 2025. Все права защищены. |